Smart-seq3 and Smart-seq3xpress single-cell RNA sequencing of bone marrow cells from MDS-RS patients
https://doi.org/10.48723/0f0c-p816
This dataset consists of Smart-seq3 single-cell RNA sequencing data of purified RS from the bone marrow and peripheral blood of 2 MDS-RS patients; and Smart-seq3xpress single-cell RNA sequencing data of FACS-sorted hematopoietic stem cells (HSC), multipotent progenitors (MPP), megakaryocyte-erythroid progenitors (MEP) and erythroblasts from 1 MDS-RS patient. The objective of this data collection was to assess several parameters on how the bone marrow of MDS-RS patients differs from that of healthy donors.
This dataset includes raw sequencing data in .fastq format, processed count matrices and associated pseudonymized metadata.
Processing: In brief, cells were sorted into 384-well plates containing 3uL Vapor-Lock (Qiagen) and 0.3uL lysis buffer consisting of 0.125 µM OligodT30VN (5'-Biotin-ACGAGCATCAGCAGCATACGAT30VN-3'; IDT) adjusted to reverse transcription (RT), 0.5mM dNTPs/each adjusted to RT volume, 0.1% Triton X-100, 5% PEG8000 adjusted to RT volume, 0.4u RNase Inhibitor (Takara Bio, 40 U/µL). After cell sorting plates were briefly centrifuged before storage at -80C. Before RT, plates were denatured at 72 degrees for 10 min followed by addition of 0.1 µL of RT mix; 25 mM Tris-HCL pH 8.4 (Fischer Scientific), 30mM NaCl (Ambion), 1 mM GTP (Thermo Fisher Scientific), 2.5 mM MgCl2 (Ambion), 8 mM DTT (Thermo Fisher Scientific), 0.25 U/µl RNase Inhibitor (Takara Bio), 0.75 µM Template Switching Oligo (TSO) (5′-Biotin-AGAGACAGATTGCGCAATGNNNNNNNNWWrGrGrG-3′; IDT) and 2 U/µl of Maxima H Minus reverse transcriptase (Thermo Fisher Scientific). Plates were quickly centrifuged after dispensing to ensure merge of lysis and RT volumes. RT was incubated at 42 °C for 90 minutes, followed by ten cycles of 50 °C for 2 minutes and 42 °C for 2 minutes. After RT, 0.6 µL PCR mix was dispensed to each well containing the following; 1× SeqAmp PCR buffer (Takara Bio), 0.025 U/µl of SeqAmp polymerase (Takara Bio) and 0.5 µM Smartseq3 forward and reverse primer. Plates were quickly spun down before being incubated as follows: 1 minute at 95 °C for initial denaturation, 14 cycles of 10 seconds at 98 °C, 30 seconds at 65 °C and 2–6 minutes at 68 °C. Final elongation was performed for 10 minutes at 72 °C.
The dataset consists of 2 folders:
- SS3_FACS_PB-BM_RS
- SS3xpress_FACS_HSC_MPP_MEP_EB
The folder SS3_FACS_PB-BM_RS contains 1 rds file, 3 txt files, and 1 compressed folder (tar.gz) with fastq files.
The folder SS3xpress_FACS_HSC_MPP_MEP_EB contains 1 rds file, 7 txt files, and 2 GNU zipped fastq files.
The documentation file File_list_SS3_SS3xpress.txt contains a full list of the files in the dataset.
Documentation files
Documentation files
Citation and access
Citation and access
Data access level:
Creator/Principal investigator(s):
Research principal:
Data contains personal data:
Yes
Type of personal data:
Genetic and biological data of patients
Code key exists:
Yes
Sensitive personal data:
Yes
Citation:
License:
Language:
Method and outcome
Method and outcome
Unit of analysis:
Population:
Patients with Myelodysplastic neoplasms with ring sideroblasts (MDS-RS)
Study design:
- Preklinisk studie
Sampling procedure:
Description of sampling:
Bone marrow (BM) and/or peripheral blood (PB) samples were collected from 36 MDS-RS and 3 MDS non-RS patients evaluated at Karolinska University Hospital, Huddinge, Sweden. Diagnostic procedures were performed according to the European LeukemiaNet recommendation and WHO classification for myeloid neoplasms. As the specific purpose was to dissect the pathobiology of SF3B1-mutant MDS-RS, all MDS-RS patients belonged to the SF3B1α category in the IPSS-M risk classification. RS presence was quantified according to standard clinical practice. Additional samples were collected from a total of 40 healthy normal bone marrow (NBM) donors for control purposes. Please note that a deidentified donor and experiment index is provided in the companion publication for this dataset, including clinical and mutational status. All source material was provided with written informed consent for research use, given in accordance with the Declaration of Helsinki.
Samples/material - Existing from scientific collection/biobank
Samples/material - Existing from scientific collection/biobank
Name:
Karolinska Institutet MDS biobank
Type(s) of sample:
Bone marrow cells
Administrative information
Administrative information
Responsible department/unit:
Department of Medicine, Huddinge [H7]
Ethical Review
Ethical Review
Reviewer:
- Stockholms etikprövningsnämnd
Registration number:
2017/1090-31/4
Funding
Funding
Funding agency:
- Knut och Alice Wallenbergs stiftelse
Award number:
2017.0359
Funding agency:
- Vetenskapsrådet
Öppnar nytt fönster hos ror.org.
ROR
Award number:
2021-01404_VR
Award title:
Sjukdomsmekanismer och riktad behandling vid myelodysplastiskt syndrom
Funding information:
Myelodysplastiskt syndrom (MDS) är en form av blodcancer som uppstår i benmärgens stamceller. Dessa drabbas av mutationer som leder till att de inte mognar ut till ett tillräckligt antal normala blodceller. Den vanligaste bristen är anemi vilken ofta utvecklas till kroniskt transfusionsbehov. En annan betydande risk är att sjukdomen förvärras och övergår i akut leukemi. MDS är en sjukdom som ger försämrad livskvalitet och där de flesta undergrupper och i synnerhet högrisk MDS har mycket kort förväntad överlevnad utan behandling.Jag bildade för 35 år sedan den Nordiska MDS gruppen (NMDSG) bestående av kliniker och forskare med intresse för sjukdomen. NMDSG är en av världens främsta kliniska forskargrupper inom ämnet och har genomfört ett stort antal kliniska studier som lett till förbättrade vårdprogram och förståelse för sjukdomsmekanismer vid MDS. Parallellt med denna kliniska verksamhet har vi byggt upp en laborativ forskningsmiljö med hög kompetens att svara på viktiga frågor om sjukdomsmekanismer och hur dessa påverkas av behandling. Under senare år har vi också i internationellt samarbete byggt upp nya system för att analysera både mutationer och genuttryck vid MDS, både sådana som ger information om prognos och sådana som ger vägledning om behandling. I den första delen av projektet studerar vi 1000 mycket väl karaktäriserade patienter i syfte att förstå riskfaktorer för överlevnad, leukemiutveckling och utveckling av kroniskt transfusionsbehov, samt svar på olika behandlingar.Vi har under många år studerat MDS subgruppen MDS undergruppen MDS med ringsideroblaster (MDS-RS), en MDS grupp som kännetecknas av mutationer i genen SF3B1 vilket leder till transfusionskrävande anemi. Orsaken är att mutationen orsakar felaktig avläsning av vissa delar av DNA, i synnerhet de som kodar för tillverkning av hemoglobin och för mitokondriernas funktion. Under den senaste projektperioden har vi beskrivit att mutationerna uppstår i de hematopoetiska stamcellerna och att de flesta men inte alla stamceller är muterade. Graden av anemi beror på hur många icke-muterade stamceller som finns kvar. Vår fråga är nu vad det är som gör att de muterade stamcellerna ”vinner” över de friska stamcellerna och om det finns vägar att stärka de kvarvarande friska stamcellerna. Vi har också som första lab i världen utvecklat en odlingsmodell som ger både mogna röda blodkroppar och de ringsideroblaster som är sjukdomens kännetecken. Genom att använda sk singel-cell sekvensering och dessa modeller kan vi nu undersöka vilka cellulära och molekylära händelser som leder fram till icke-fungerande röd blodkroppsbildning och vilka mål för riktad behandling som skulle kunna identifieras.Allogen stamcellstransplantation är den enda botande behandlingen för patienter med myelodysplastiskt syndrom (MDS). Denna behandling är dock riskabel och cirka 15-20% dör pga transplantationsrelaterade komplikationer. Vidare får minst en tredjedel av patienterna återfall i sin sjukdom och endast hälften av patienterna uppnår således bot. Studier visar att man minska risken för återfall om man med förfinade metoder kan upptäcka kvarvarande sjukdom på ett tidigt stadium. Vi har genomfört del 1 av en stor nordisk studie där vi utvecklat patient-specifika markörer för minimal kvarvarande sjukdom och visat att vi genom benmärgsprov kan förutsäga återfall med nästan 3 månader. Patient-specifika mutationer analyseras med hjälp av en innovativ teknik kallad digital droplet PCR (ddPCR). I nästa studie testar vi om förebyggande behandling baserat på ddPCR resultat kan förbättra botfrekvensen. Huvudstudien omfattas inte av denna ansökan men vi vill nu utveckla metoder för att kunna analysera blodprover i stället för benmärgsprover, vilket på ett avgörande sätt skulle förbättra för patienterna.Sammantaget syftar våra projekt till att genom precisionsmedicin kunna ge varje patient bästa möjliga utredning, prognostiska information och behandling.
Funding agency:
- Cancerfonden
Award number:
19 0200
Funding agency:
- Cancerfonden
Award number:
21 0340
Topic and keywords
Topic and keywords
Swedish Standard Classification of Research Subjects 2025:
Publications
Publications
Citation:
Moura PL, Mortera Blanco T, Hofman IJ, Todisco G, Kretzschmar WW, Björklund AC, Creignou M, Hagemann-Jensen M, Ziegenhain C, Cabrerizo Granados D, Barbosa I, Walldin G, Jansson M, Ashley N, Mead AJ, Lundin V, Dimitriou M, Yoshizato T, Woll PS, Ogawa S, Sandberg R, Jacobsen SW, Hellström-Lindberg E. Erythroid differentiation enhances RNA mis-splicing in SF3B1-mutant myelodysplastic syndromes with ring sideroblasts. Cancer Res. 2023 Nov 3. doi: 10.1158/0008-5472.CAN-23-3038.
